银染测验是检测聚丙烯酰胺凝胶中的蛋白质，是银离子在碱性pH 环境下被还原成金属银，沉淀在蛋白质的表面上显色的原理。
银染注意事项:
1. 银染主要出现在胶的表面，用薄胶（0.5-0.75mm）可以提高灵敏度。
2. 对于考马斯亮蓝染色的胶，可用甲醇将胶漂洗后，继续进行染色。乙酸会干扰染色，因此要确保将凝胶中的乙酸*洗净。如果凝胶被过度银染，可用Rapid Fix脱色，并用考马斯亮蓝二次染色。
3. 不同蛋白质对该方法的反应是不一样的，尤其是碱性蛋白染色效果差。因此，不宜用该方法测定不同蛋白的比例。
4. 染色过程中，缓慢的振荡是必要的，一般选择40-60 rpm.
5. 凝胶表面的裂纹多是由于压力、手印及表面干燥所致，所以全程操作中都应带手套。
6. 凝胶背景呈均一的黑色多是水中的杂质引起的，所以溶液的配制应使用电导率小于1 μS的去离子水。
7. 如果染色后有呈灰尘或烟雾状灰色或棕色的沉淀出现在凝胶表面，可能是在几步漂洗过程中洗得不够*，或是染色过程时温度太低。
8. 较深的银染背景多是丙烯酰胺中的杂质所致。
9. 在zui初甲醇洗脱时就应该先除去甘油、尿素、*、Triton X-100和两性电解质这些干扰性物质。
10. 室温操作，温度的波动往往会干扰染色的效果，恒温水浴可以解决这个问题。
11. 当蛋白质中含有核酸或金属时，染色则不会奏效。改变固定剂和染色之前对胶进行漂洗可以改进染色效果。
12. SDS凝胶中的巯基乙醇会导致在60 KDa或67 KDa处出现两条水平线。减少巯基乙醇的用量即可避免。
13. 凭借戊二醛预处理可以使各种蛋白质的染色提高40倍。
14. 染色使用的玻璃器皿必须非常干净，用酸浸泡可以满足要求。
15. 染色后应尽快照相，随着时间延长，蛋白条带会变浅，而背景会加深
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