脊椎动物适用之方法

当实验中途停止或结束时，实验者应站在实验动物的立场上以人道的原则去处置动物，原则上不给实验动物任何恐怖和痛苦，也就是要施行。是指实验动物在没有痛苦感觉的情况下死去。实验动物方法的选择取决于动物的种类与研究的课题。

一、蛙类

常用金属探针插入枕骨大孔，破坏脑脊髓的方法处死。将蛙用湿布包住，露出头部，左手执蛙，并用食指按压其头部前端，拇指按压背部，使头前俯；右手持探针由凹陷处垂直刺入，刺破皮肤即入枕骨大孔。这时将探针转向头方，向前深入颅腔，然后向各方搅动，以捣毁脑组织。再把探针由枕骨大孔刺入并转向尾方，刺入椎管，以破坏脊髓。脑和脊髓是否*破坏，可检查动物四肢肌肉的紧张性是否*消失。拔出探针后，用一小干棉球将针孔堵住，以防止出血。操作过程中要防止毒腺分泌物射入实验者眼内。如被射入时，则需立即用生理盐水冲洗眼睛。

二、大鼠和小鼠

1. 颈椎脱臼法：右手抓住鼠尾用力向后拉，同时左手拇指与食指用力向下按住鼠头。将脊髓与脑髓拉断，鼠便立即死亡。

2. 断头法：用剪刀在鼠颈部将鼠头剪掉，鼠立即死亡。

3. 击打法：右手抓住鼠尾，提起，用力摔击其头部，鼠痉挛后立即死去。或用木锤用力击打鼠头部也可致死。

4. 急性大出血法：可采用鼠眼眶动脉和静脉急性大量失血方法使鼠立即死亡。

5. 药物致死法：吸入一定量的一氧化碳、、氯仿等均可使动物致死。

三、狗、兔、豚鼠

1. 空气栓塞法：向动物静脉内注入一定量的空气，使之发生栓塞而死。当空气注入静脉后，可在右心随着心脏的跳动使空气与血液成泡沫状，随血液循环到全身。如进到肺动脉，可阻塞其分支，进入心脏冠状动脉，造成冠状动脉阻塞，发生严重的血液循环障碍，动物很快致死。一般兔、猫等静脉内注入20~40ml空气即可致死。每条狗由前肢或后肢皮下静脉注入80~150ml空气，可很快致死。

2. 急性失血法：先使动物轻度麻醉，如狗可按每公斤体重静脉注射硫喷妥钠20~30mg，动物即很快入睡。暴露股三角区，用锋利的杀狗刀在股三角区作一个约10厘米的横切口，把股动、静脉全切断，立即喷出血液。用一块湿纱布不断擦去股动脉切口周围处的血液和血凝块，同时不断的用自来水冲洗流血，使股动脉切口保持畅通，动物在3~5分钟内即可致死。采用此种方法，动物十分安静，对脏器无损伤，对活杀采集病理切片标本是一种较好的方法。

如果处死狗的同时要采集其血液时，则在用硫喷妥钠轻度麻醉后，将狗固定在狗*上。分离颈动脉，插一根较粗的塑料管，放低狗头，打开*，使动脉血流入装有抗凝血的容器内，并不断摇晃，以防血液凝固。

二氧化碳麻醉箱是通过直接或间接的缺氧引起动物死亡的，它可以在各种场所使用，并可以不同的速度使动物失去意识。要想达到无痛苦、无疼痛的死亡，就要在动作(肌肉活动)消失之前丧失意识。但是动作消失并不等同于丧失意识和没有痛苦。因此，只能引起肌肉麻痹而不能使动物丧失意识的药物不能作为。二氧化碳法可能使动物在丧失意识之后产生运动活动，但这些运动活动只是反射活动，不能被动物感知。因此可以独立的作为方法。  

传统的断头、放血等动物致死方式，方法比较残忍，容易对实验人员的心理产生负面影响；麻醉致死的方法更不可能，本身易燃易爆并且有很强的致癌性，对实验人员伤害更大。二氧化碳安全性高，也能有效减少实验动物的疼痛和痛苦。

    该系统体积小巧，占地空间小，可有效减少二氧化碳的使用，易学易用，操作简单。

二氧化碳麻醉方式更符合动物福利。

    多种型号可选，我们会为您推荐更合适的方案：